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Aug 15, 2023

Das Potenzial für die Übertragung von zoonotischer Malaria in fünf von Nichtbewohnern bewohnten Gebieten Indonesiens

Parasites & Vectors Band 16, Artikelnummer: 267 (2023) Diesen Artikel zitieren 1 Details zu Altmetric Metrics Indonesien ist die Heimat vieler Arten nichtmenschlicher Primaten (NHPs). Abholzung, die immer noch stattfindet

Parasites & Vectors Band 16, Artikelnummer: 267 (2023) Diesen Artikel zitieren

1 Altmetrisch

Details zu den Metriken

Indonesien ist die Heimat vieler Arten nichtmenschlicher Primaten (NHPs). Die in Indonesien immer noch andauernde Abholzung hat den Lebensraum der NHPs in der Republik erheblich reduziert. Dies hat zu einer Intensivierung der Interaktionen zwischen NHPs und Menschen geführt, was die Möglichkeit eines Übergreifens von Krankheitserregern eröffnet. Ziel der vorliegenden Studie war es, die Prävalenz von Malariaparasiteninfektionen in NHPs in fünf Provinzen Indonesiens im Jahr 2022 zu ermitteln. Untersucht wurden auch Arten der Gattung Anopheles, die potenziell Malariaerreger auf den Menschen übertragen können.

Eine epidemiologische Untersuchung wurde durchgeführt, indem NHPs in Fallen gefangen wurden, die an mehreren Orten in den fünf Provinzen installiert waren, darunter auch in der Umgebung eines Naturschutzgebiets. Blutproben wurden aseptisch entnommen, nachdem die NHPs anästhesiert worden waren; Die Tiere wurden nach der Untersuchung freigelassen. Blutausstriche wurden auf Glasobjektträgern und getrocknete Blutfleckentests auf Filterpapier angefertigt. Infektionen mit Plasmodium spp. wurden morphologisch aus den mit Giemsa-Lösung gefärbten Blutausstrichen und molekular durch Polymerasekettenreaktion und DNA-Sequenzierung unter Verwendung von rplU-Oligonukleotiden bestimmt. Die NHPs wurden auf Artenebene identifiziert, indem das mitochondriale Cytochrom-C-Oxidase-Untereinheit-I-Gen und das interne transkribierte Spacer-2-Gen als Barcode-DNA-Marker verwendet wurden. Die Mückenüberwachung umfasste das Sammeln von Larven aus Brutstätten und das Sammeln erwachsener Tiere mithilfe der HLC-Methode (Human Landing Catch) zusammen mit Lichtfallen.

Die Analyse der aus den Trockenbluttests der 110 gefangenen NHPs extrahierten DNA ergab, dass 50 % positiv auf Plasmodium waren, nämlich Plasmodium cynomolgi, Plasmodium coatneyi, Plasmodium inui, Plasmodium knowlesi und Plasmodium sp. Die durch mikroskopische Untersuchung der Blutausstriche ermittelte Prävalenz betrug 42 %. Arten der Primatengattung Macaca und der Familie Hylobatidae wurden durch molekulare Analyse identifiziert. Die häufigsten Mückenbrutstätten waren Gräben, Pfützen und natürliche Teiche. Einige der durch HLC gefangenen Anopheles letifer trugen Sporozoiten von Malariaparasiten, die die Krankheit bei Primaten verursachen können.

Die Malariaprävalenz in den NHPs war hoch. Anopheles letifer, ein potenzieller Überträger der zoonotischen Malaria, wurde nach seiner Sammlung in Zentral-Kalimantan mit der HLC-Methode identifiziert. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass das Potenzial für die Übertragung zoonotischer Malaria in mehreren Regionen Indonesiens immens ist.

Malaria, eine der ältesten Infektionskrankheiten, bleibt in Indonesien ein Problem für die öffentliche Gesundheit, obwohl die Häufigkeit in den westlichen Teilen des Archipels deutlich zurückgegangen ist. Malaria wird durch Arten der apikomplexen Parasitengattung Plasmodium verursacht, die durch Mückenvektoren zwischen ihren Wirbeltieren übertragen werden. In Südostasien sind mindestens 13 Plasmodium-Arten in der Lage, nichtmenschliche Primaten (NHPs) zu infizieren, und sieben von ihnen können auf natürliche Weise Makaken infizieren [1,2,3]. Eine Infektion ihrer natürlichen Wirte durch eine dieser sieben Plasmodium-Arten, d. h. Plasmodium cynomolgi, Plasmodium brasilianum, Plasmodium eylesi, Plasmodium knowlesi, Plasmodium inui, Plasmodium schwetzi und Plasmodium simium, führt normalerweise zu einer sehr geringen Parasitämie und verläuft mild oder asymptomatisch Krankheit [4]. Plasmodium falciparum, P. vivax, P. malariae und P. ovale kommen häufig beim Menschen vor, aber P. knowlesi, das in ganz Südostasien zoonotische Malaria verursacht, infiziert Makaken auch auf natürliche Weise [5, 6]. In Indonesien wurden 38 NHP-Arten identifiziert [7,8,9]; Neun davon sind im Land endemische Makakenarten, darunter der Mentawai-Schwanzaffe (Macaca pagensis), der Schwarze Makaken (Macaca nigra), der Moormakak (Macaca maura), der Heckmakak (Macaca hecki) und der Stiefelaffe ( Macaca ochreata), der Tonke-Makak (Macaca tonkeana), der Buton-Makak (Macaca brunnescens) und der Gorontalo-Makak (Macaca nigrescens) [10, 11]. Wird es als sinnvoll erachtet, Wildmakaken auf Plasmodium spp. zu überwachen? die sie beherbergen, und die Mückenüberträger dieser Parasiten, um die Epidemiologie der Krankheit besser zu verstehen, sodass praktikable, wirksame Maßnahmen vorgeschlagen werden können, um das Risiko einer zoonotischen Malariainfektion zu verringern.

In den letzten drei Jahrzehnten hat die Abholzung von Wäldern für Landwirtschaft, Bergbau und Umsiedlung den Lebensraum von NHPs im westlichen Teil Indonesiens, einschließlich der Inseln Sumatra, Java, Kalimantan (der indonesische Teil von Borneo), Sulawesi, Bali usw., erheblich reduziert die Kleinen Sundainseln [12]. Dies hat in vielen Teilen Indonesiens zu einer Intensivierung der Interaktionen zwischen NHPs und Menschen geführt und damit die Möglichkeit einer Übertragung von Krankheitserregern von NHPs und anderen Wildtieren auf den Menschen eröffnet, wie Berichte über Fälle von zoonotischer Malaria in Sumatra und Kalimantan belegen [13,14,15]. Ziel der vorliegenden Studie war es, die Prävalenz von Malariaparasiteninfektionen in NHPs in fünf Provinzen Indonesiens im Jahr 2022 zu bestimmen. Die wilden NHPs wurden mithilfe von Fallen gefangen, die an mehreren Orten installiert wurden, unter anderem in der Umgebung eines an Siedlungen angrenzenden Wildschutzgebiets wurden nach der Untersuchung freigelassen. Siedler, die in der Nähe des Wildschutzgebiets wohnen, wurden auf zoonotische Malaria-Infektionen untersucht. In den fünf Provinzen wurden Mückenüberträger von Malaria überwacht.

Die Probenahme von NHPs und Mückenüberträgern wurde in den folgenden fünf Provinzen Indonesiens durchgeführt: Zentral-Java (Cikakak-Wildschutzgebiet und Dorf Kalisalak in der Regentschaft Banyumas); Nord-Sumatra (Wald neben dem Dorf Aek Batang Paya, Unterbezirk Sipirok, Regentschaft Süd-Tapanuli); Aceh (Dorf Iboih, Unterbezirk Sukakarya, Gemeinde Sabang; das Dorf grenzt an den Naturpark Weh Island); West-Sumatra (Mount Meru, Unterbezirk Lubuk Begalung und Lubuk Minturun, Bezirk Koto Tangah, Regentschaft der Stadt Padang); und Zentral-Kalimantan (Nyaru Menteng Arboretum, Taman Wisata Bukit Tangkiling Naturpark und eine Siedlung in der Nähe des Stadtwaldes von Palangkaraya) (Abb. 1).

Lage der Probenahmestellen (rote Kreuze) nahe der Grenze von fünf Provinzen Indonesiens

Von August bis November 2022 wurden an NHP-Untersuchungsstandorten Fallen installiert und täglich auf das Vorhandensein gefangener NHPs überwacht. Die NHPs wurden durch intramuskuläre Injektion mit Zoletil (4 mg/kg Körpergewicht) (Virbac) anästhesiert. Für jedes Tier wurden Geschlecht, morphologische Merkmale, Gewicht und Körpertemperatur erfasst. Blut (3-ml-Proben) wurde entnommen und dann in Röhrchen mit Ethylendiamintetraessigsäure überführt. Auf Objektträgern wurden dünne und dicke Blutausstriche hergestellt und drei Blutstropfen auf Whatman 3 MM-Filterpapier zur DNA-Extraktion und molekularen Analyse gesammelt.

In Aceh und Zentral-Java wurden Massenblutuntersuchungen durchgeführt. Bewohner des an das Wildschutzgebiet angrenzenden Dorfes wurden gefragt, ob sie freiwillig an der Studie teilnehmen möchten, nachdem sie Informationen darüber erhalten hatten. Den Teilnehmern wurde Blut durch aseptisches Einstechen in den Finger entnommen und die Tropfen auf Whatman-Filterpapier für Trockenbluttests und auf einem Glasobjektträger für die Herstellung dünner und dicker Blutausstriche gemäß den Standardverfahren der Weltgesundheitsorganisation gesammelt [16]. ].

Dicke und dünne Blutausstriche der NHPs und menschlichen Teilnehmer wurden mit Giemsa gefärbt und unter dem Lichtmikroskop unter Verwendung einer 100-fachen Objektivlinse mit Immersionsöl auf das Vorhandensein von Malariaparasiten untersucht. Mindestens 200 mikroskopische Felder des dicken Abstrichs wurden untersucht, um die Parasitendichte zu bestimmen; Wurden keine Parasiten gefunden, galt die Probe als negativ.

Die Gewässer in den Untersuchungsgebieten wurden anhand eines standardisierten Protokolls der Weltgesundheitsorganisation (17) auf das Vorhandensein von Mückenlarven untersucht. An verschiedenen Probenahmestellen wurden Larven erfasst, um Bruthabitate zu identifizieren und zu bewerten. Die verschiedenen Arten von Gewässern wurden nach Tiefe, Wasserklarheit und Vegetation charakterisiert und die geografischen Koordinaten mithilfe der Open Data Kit (ODK) Collect-Anwendung erfasst. Die Mückenlarven in jedem Gewässer wurden gezählt und mit einem Schöpflöffel und einer Pipette gesammelt. Bei der Probenahme wurden der Salzgehalt und der pH-Wert des Wassers aufgezeichnet.

Die Artenvielfalt der Mücken wurde mithilfe der HLC-Methode (Human Landing Catch) bestimmt. Bewohner, die freiwillig an der Studie teilnahmen, wurden in der HLC-Methode geschult. Pro Haus wurden zwei Kollektoren eingesetzt, einer im Innenbereich und einer im Freien (auf der Veranda). Die Freiwilligen sammelten die Mücken, die auf ihren freiliegenden Unterschenkeln landeten, mit einem Mundsauger ein. Die Sammlungen wurden stündlich für 50 Minuten von 18:00 bis 06:00 Uhr durchgeführt. Die Mücken wurden sofort auf dem Feld mit Chloroformdampf getötet und in einem Röhrchen mit Kieselgel transportiert. Die erwachsenen Mücken wurden anhand ihrer Morphologie mithilfe illustrierter Schlüssel einer Art zugeordnet [18]. Eine zufällig ausgewählte Untergruppe morphologisch identifizierter Proben wurde auch molekular identifiziert, indem die Gene für den internen transkribierten Spacer 2 (ITS2) und die Cytochromoxidase-Untereinheit I (COI) sequenziert wurden [19,20,21,22,23]. Diese Proben wurden so ausgewählt, dass sie alle morphologisch identifizierten Exemplare und die Orte, an denen sie gesammelt wurden, repräsentieren. Die Mückenproben wurden mit einem Teflon-Pistill zermahlen und dann in 1,5-ml-Eppendorf-Mikroröhrchen mit 50 µl Wasser und 100 µl Saponin überführt. Mücken-DNA wurde mit einem Chelex-100-Ionenaustauscher (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA) gemäß einem veröffentlichten Verfahren extrahiert [24]. Die DNA wurde entweder sofort für die Polymerase-Kettenreaktion (PCR) verwendet oder zur späteren Analyse bei -20 °C gelagert.

Parasiten-DNA und NHP-DNA wurden mit einem QIAamp DNA Mini Kit (QIAGEN, Hilden, Deutschland) aus den NHP-Blutproben extrahiert. Die DNA wurde entweder sofort für die PCR-Amplifikation verwendet oder zur späteren Analyse bei –20 °C gelagert.

Extrahierte genomische DNA wurde durch PCR amplifiziert, die auf die ITS2- und COI-Gene zur Artenidentifizierung der Mücken und nur auf COI für die NHP-Proben abzielte. Die vorwärts- und rückwärtsgenspezifischen Oligonukleotide für ITS2 waren ITS2A (5ʹ-TGTGAACTGCAGGACACAT-3ʹ) bzw. ITS2B (5ʹ-TATGCTTAAATTCAGGGGGT-3ʹ) [24]; Die für COI verwendeten Universalprimer waren LCO1490 (5'-GGTCAACAAATCATAAAGATATTGG-3') und HCO2198 (5'-TAAACTTCAGGGTGACCAAAA AATCA-3ʹ) [25]. Die PCR-Bedingungen für die COI-Amplifikation waren wie folgt: Inkubation bei 95 °C für 1 Minute, gefolgt von 35 Zyklen bei 95 °C für 15 Sekunden, 53 °C für 15 Sekunden und 72 °C für 60 Sekunden, mit abschließender Verlängerung bei 72 °C für 5 Min. Für Plasmodium sp. Zum Nachweis wurde ein halbverschachtelter PCR-Assay verwendet, der auf die ribosomalen RNA-Gene der kleinen Untereinheit abzielte, unter Verwendung der Primer rplU1 (5ʹ-TCAAAGATTAAGCCATGCAAGTGA-3ʹ) und rplU5 (5ʹ-CCTGTTGTTGCCTTAAACTCC-3ʹ) und eine zweite PCR unter Verwendung von rplU1 und rplU4 (5ʹ-TACCCGTCATAGCCATGTTAGGCCAATACC). -3ʹ) [22]. Die PCR-Bedingungen waren wie in [26] beschrieben. Alle Amplikons wurden mittels Gelelektrophorese mit 1–2 % Agarosegelen sichtbar gemacht. Die Konsensussequenzen dieser ribosomalen RNA-Gene kleiner Untereinheiten wurden mit denen in der NCBI-Nr-Datenbank mithilfe von BLAST verglichen, um die Artidentifizierung zu bestätigen.

Am Standort Nord-Sumatra bestand der NHP-Habitat teilweise aus einer Plantage. An den anderen Standorten lebten die NHPs in ihrem natürlichen Lebensraum, interagierten aber auch mit Siedlern in der Umgebung. In den in den fünf Untersuchungsgebieten installierten Fallen wurden innerhalb von 20 Tagen insgesamt 110 NHPs gefangen. Die Grundmerkmale der NHPs sind in Tabelle 1 aufgeführt. 61 der NHPs waren männlich und 49 weiblich. Das Körpergewicht der NHPs lag zwischen 3,4 und 5,5 kg und die durchschnittliche Körpertemperatur zwischen 36,7 und 39,5 °C. Die NHPs waren entweder Makaken (Familie Cercopithecidae) und Gibbons (Familie Hylobatidae). Bei den meisten gefangenen Makaken handelte es sich um Langschwanzmakaken, einige auch um Schweineschwanzmakaken. Die Verteilungen der in dieser Studie untersuchten NHPs sind in Tabelle 2 zusammengefasst.

Die PCR-Amplifikation des COI-Gens war bei 93 der eingefangenen NHPs erfolgreich und bei 17 davon erfolglos. Die Amplikonsequenzierung bestätigte, dass diese 93 NHPs Individuen der beiden morphologisch identifizierten Makakenarten, nämlich Macaca fascicularis und Macaca nemestrina, umfassten. Zwei Arten der Familie Hylobatidae wurden ebenfalls molekular identifiziert, Hoolock hoolock und Hylobates albibarbis. Zwischen einigen Untersuchungsorten wurden Unterschiede in der DNA-Sequenz des COI-Gens von M. fascicularis festgestellt.

Von den insgesamt 110 in den fünf Provinzen gefangenen NHPs wurden bei 47 Personen morphologisch Plasmodium-Infektionen diagnostiziert (Tabelle 3). Eine molekulare Analyse unter Verwendung der ribosomalen DNA oder der mitochondrialen COI-Gene zeigte jedoch, dass 55 der NHPs mit Plasmodium spp. infiziert waren. (Tabelle 3), nämlich Plasmodium inui, Plasmodium cynomolgi, Plasmodium coatneyi, Plasmodium knowlesi und andere Plasmodium spp. (Tabelle 4; Abb. 2, 3, 4). Die höchste Plasmodium-Infektionsrate bei den Makaken gab es im Dorf Iboih in Aceh. Bei den in Aceh oder Nord-Sumatra gefangenen Makaken wurde keine P. knowlesi-Infektion festgestellt. Die am weitesten verbreiteten Arten waren P. inui und P. cynomolgi, gefolgt von P. coatneyi und dann P. knowlesi (Tabelle 4). Plasmodium sp. wurde in 16 der NHP positiv für Malaria identifiziert. Zwei in dieser Studie identifizierte Arten der Gattung Hylobates waren mit keiner Plasmodium-Art infiziert.

Plasmodium cynomolgi; eine Ringform; b Trophozoit; c Merozoit; d männlicher Gametozyten; Der weibliche Gametozyten

Plasmodium coatneyi und Plasmodium knowlesi; eine Ringform von P. coatneyi; b-Ringform von P. knowlesi

Plasmodium inui; eine Ringform; b Trophozoitenstadium; c Merozoitenstadium

Die Abbildungen 2, 3 und 4 zeigen morphologische Merkmale verschiedener Stadien der in dieser Studie gefundenen Plasmodium-Arten. In Abb. 2 sind mehrere Blutstadien von P. cynomolgi dargestellt. Die infizierten roten Blutkörperchen sind deutlich vergrößert. Plasmodium coatneyi und P. knowlesi sind in dicken und dünnen Blutausstrichen morphologisch schwer zu unterscheiden. Plasmodium inui, das bei NHPs Malaria verursachen kann, zeigt deutlich ein pigmentiertes Trophozoitenstadium in den roten Blutkörperchen.

Es wurden vierzehn Arten von Mückenbrutplätzen gefunden (Tabelle 5; Abb. 5), wobei Gräben und Pfützen am häufigsten vorkamen. Zu den Arten von Mückenbrutplätzen, die Anopheles-Larven enthielten, gehörten künstliche Wasserbehälter, Kokosnussschalen, Gräben, Hufabdrücke, künstliche Teiche, Mangroven, natürliche Teiche, Reisfelder, Pfützen, Quellen, Bachränder, Sümpfe, Reifenspuren und Brunnen . Der pH-Wert der Brutstätten lag zwischen 2,5 und 9,6 und der Salzgehalt zwischen 0 und 23 ppm

Arten von Brutstätten für Mücken. ein künstlicher Wasserbehälter; b Kokosnussschale, Blatt, Baumloch; c Graben; d Hufabdruck; Der künstlich angelegte Teich; f Mangrove; g natürlicher Teich; h Reisfeld; ich pfütze; j Frühling; k Stream-Marge; lch Sumpf; m Reifenspur; Na ja

Arten der Gattung Anopheles und andere Mückenarten wurden in Zentral-Java, Nord-Sumatra, Aceh und Zentral-Kalimantan gesammelt (Tabelle 6). Aus Zeitgründen war die Mückensammlung nur in West-Sumatra auf Larven beschränkt. Viele Mückenarten neben Anopheles spp. wurden mittels HLC gesammelt. Die größte Mückenvielfalt war in Zentral-Kalimantan zu verzeichnen, wo vor allem An-Mückenarten gesammelt wurden. Letifer und am niedrigsten in Zentral-Java. Die vorherrschende Art, die in Nord-Sumatra gesammelt wurde, war Anopheles kochi und in Aceh Anopheles dirus.

Basierend auf der Morphologie der erwachsenen Mücken konnten sechs Anopheles-Arten identifiziert werden: Anopheles dirus, Anopheles kochi, Anopheles montanus, Anopheles nigerrimus, Anopheles letifer und Anopheles umbrosus (Tabelle 7). Die anderen identifizierten Mückenarten waren Armigeres subalbatus, Culex quinquefasciatus, Culex vishnui und Mansonia sp. Die molekulare Analyse bestätigte das Vorhandensein von An. dirus, An. Kochi, An. sinensis, An. sundaicus und An. vagus.

Die PCR-Amplifikation von Proben von 399 erwachsenen Anopheles, die mittels HLC gesammelt wurden, ergab, dass zwei positiv auf Plasmodium-DNA waren. Diese positiven Proben wurden als An identifiziert. Letifer, gefangen im Nyaru Menteng Arboretum in Zentral-Kalimantan (Tabelle 8).

In Gebieten von Aceh und Zentral-Java, in denen eine intensive Interaktion zwischen Menschen und NHPs besteht, wurden begrenzte Massenblutuntersuchungen auf zoonotische Malariainfektionen durchgeführt. In Aceh nahmen 36 Bewohner des Dorfes Iboih an der Blutuntersuchung teil; In Zentral-Java nahmen 123 Einwohner an der Umfrage teil. In keinem der Untersuchungsgebiete wurden Fälle zoonotischer Malaria festgestellt.

In den untersuchten Makakenpopulationen in den fünf Provinzen gab es eine hohe Prävalenz von Plasmodium-Infektionen, wobei die höchste Prävalenz in Sabang, Aceh, zu verzeichnen war. Die in den fünf Provinzen am häufigsten identifizierten Plasmodium-Arten waren P. inui und P. cynomolgi. Plasmodium knowlesi, der häufigste Erreger zoonotischer Malaria, wurde nur in West-Sumatra, Zentral-Kalimantan und Zentral-Java gefunden. Unsere Ergebnisse stimmen nicht mit Berichten über zoonotische Malaria in Acen überein [15]. In Sabang, Aceh, wurden Fälle zoonotischer Malaria gemeldet, die durch P. knowlesi verursacht wurden [15, 27], wir fanden jedoch keine P. knowlesi-Infektion bei den in der vorliegenden Studie untersuchten Makaken. Darüber hinaus wurde berichtet, dass Plasmodium cynomolgi, Plasmodium inui und Plasmodium fieldi zoonotische Malaria in NHP in Süd-Sumatra, Bintan Island, West-Java und Lampung verursacht haben [28,29,30]. Die Diskrepanzen zwischen diesen und unseren Ergebnissen zeigen, wie wichtig eine regelmäßige Überwachung für die Erkennung zoonotischer Malaria in diesen Gebieten und die Umsetzung von Eindämmungsbemühungen zur Verhinderung ihrer Ausbreitung ist. Die niedrigste Prävalenz, die in Nord-Sumatra festgestellt wurde, ist möglicherweise auf die Tatsache zurückzuführen, dass dort weniger NHPs gefangen wurden. Es ist besonders bemerkenswert, dass, obwohl die Interaktionen zwischen Menschen und Makaken am Rande des Cikakak-Schutzgebiets in Zentral-Java relativ intensiv sind, in der Provinz noch nie Fälle von zoonotischer Malaria gemeldet wurden. Dies ist wahrscheinlich auf das Fehlen von Anopheles-Vektoren in dieser Region zurückzuführen, die in der Lage sind, Malaria von Primaten auf den Menschen zu übertragen. Bisher identifizierte Überträger der zoonotischen Malaria gehören hauptsächlich zur Gruppe der Anopheles leucosphyrus, wobei einige andere Arten, wie Anopheles kochi und Anopheles letifer, die Krankheit ebenfalls übertragen können [31,32,33,34,35].

Macaca fascicularis war die am häufigsten in den Untersuchungsgebieten gefangene NHP-Art, und die molekulare Analyse ergab eine hohe DNA-Sequenzvariation zwischen Individuen aus verschiedenen Untersuchungsgebieten. Dieser letztgenannte Befund bestätigt die Identifizierung verschiedener Unterarten von M. fascicularis aus Sumatra, Kalimantan, Java, Bali, Sumba und Timor [10]. Macaca fascicularis lebt in Primär- und Sekundärwäldern in Tieflandgebieten und in Hochlandgebieten auf > 1000 m über dem Meeresspiegel. In Hochlandgebieten kommen sie typischerweise in Sekundärwäldern oder landwirtschaftlichen Gebieten vor [10]. In der vorliegenden Studie wurden die meisten M. fascicularis in Zentral-Java, West-Sumatra und Aceh gefangen, was durch die Tatsache erklärt werden kann, dass in Nord-Sumatra und Zentral-Kalimantan domestizierte, in Gefangenschaft gehaltene Makaken vorherrschen. Dies wiederum könnte das Fehlen oder die geringere Prävalenz von Plasmodium spp. erklären. Infektion in diesen beiden letztgenannten Bereichen. Basierend auf Informationen von Dorfbewohnern in Nord-Sumatra und Zentral-Java geht M. fascicularis häufig in Siedlungen auf Nahrungssuche. NHPs in bei Touristen beliebten Gebieten in Iboih, Aceh und Cikakak, Zentral-Java, werden oft von den Besuchern gefüttert, was zu Veränderungen im natürlichen Verhalten dieser Tiere führt und sie dazu ermutigt, mehr Zeit in Siedlungen auf der Suche nach Nahrung zu verbringen. Umweltveränderungen wie Abholzung und Stadterweiterung sind auch mit einer Zunahme der Mensch-Makaken-Interaktionen verbunden, die das Potenzial für eine zoonotische Übertragung von Malaria erhöhen [36].

Mehrere Anopheles-Arten, darunter An. Dirus gesammelt in Sabang und An. Kochi, die in Nord-Sumatra gesammelt wurden, wurden nach ihrem Fang durch HLC identifiziert, aber nur An. letifer, der in Zentral-Kalimantan gefangen wurde, war mit Plasmodium sp. infiziert. Die DNA dieses Parasiten wurde in den Kopf-Brust-Teilen der Mücke gefunden, was auf das Vorhandensein von Sporozoiten hinwies. Es ist sehr wahrscheinlich, dass An. dirus spielt eine wichtige Rolle bei der Übertragung zoonotischer Malaria in Sabang, dem Gebiet, in dem es in der vorliegenden Studie gefunden wurde, da es Berichten zufolge die Krankheit an vielen anderen Orten in Südostasien überträgt [37]. Weitere Überwachung ist erforderlich, um die Rolle von An aufzuklären. Kochi bei der Übertragung zoonotischer Malaria in Nord-Sumatra. In Zentral-Kalimantan und insbesondere im Nyaru Menteng Arboretum, wo Orang-Utans (Pongo pygmaeus) und Makaken geschützt sind, ist An. Letifer, der die NHPs und Siedler, die in der Gegend leben, beißt, wurde als zoonotischer Malariaüberträger bestätigt. Die Rolle von An. Letifer als Überträger der zoonotischen Malaria wurde auch für Sarawak beschrieben [38]. Die sehr geringe Anzahl von Individuen der Anopheles-Arten, die im Rahmen der vorliegenden Studie beprobt wurden, mit Ausnahme von An. Kochi, könnte teilweise die hier gemeldeten niedrigen Sporozoitenraten erklären.

Die Intensität der NHP-Mensch-Interaktionen in den fünf in dieser Studie untersuchten Gebieten weist auf das Potenzial für die Übertragung zoonotischer Malaria hin, wenn die Mückenüberträger dieser Krankheit vorhanden sind. Derzeit sind die Überwachung von Mückenvektoren und Massenblutuntersuchungen der Siedler, die in diesen Gebieten in der Nähe der NHPs leben, unzureichend. Wir schlagen vor, dass in diesen Gebieten eine regelmäßige Vektorüberwachung sowie Massenblutuntersuchungen obligatorisch sein sollten, insbesondere für die Siedler, die in der Nähe der Waldlebensräume der NHPs leben, und deren Besucher, da sie die Gruppen sind, die am stärksten von einer zoonotischen Malariainfektion bedroht sind .

Das erhöhte Risiko einer Spillover-Infektion der von NHPs übertragenen Malaria aufgrund der anhaltenden Verkleinerung ihres Lebensraums und der daraus resultierenden Zunahme ihrer Interaktionen mit Menschen sollte durch regelmäßige Vektorüberwachung und Massenblutuntersuchungen überwacht werden. An vier Orten in Indonesien wird derzeit eine weitere Studie durchgeführt, um die Faktoren zu ermitteln, die zur Übertragung zoonotischer Malaria beitragen können.

Alle im Rahmen dieser Studie generierten und analysierten Datensätze sind im Manuskript enthalten.

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Wir möchten Lembaga Penelitian dan Pengabdian Pada Masyarakat, der University of Hasanuddin, der University of Andalas, dem Direktorat Riset dan Pengembangan, der University of Indonesia und der National Research and Innovation Agency Indonesia für ihre anhaltende Unterstützung und Ermutigung danken. Die Autoren danken Balai Konservasi Sumber Daya Alam (Ministerium für Umwelt und Forsten, Indonesien) für ihre Unterstützung bei der Probenentnahme an den fünf Untersuchungsstandorten; Meyby Lempang Eka Putri für ihre Unterstützung bei der Probenahme in Zentral-Java; und Mahfur Zurahman und Kurnia Ilham für ihre Unterstützung bei der Probenahme in Sumatra Barat. Diese Aktivitäten waren Teil des Doktorandenprogramms des DHP an der Universität von Indonesien.

Die NHP-Probensammlung und mehrere der molekularen Tests wurden durch Mittel von Riset Kolaborasi Indonesia 2022, Ministerium für Bildung, Kultur, Forschung und Technologie, Republik Indonesien, unterstützt. Die Sammlung von Mückenproben und deren Analyse wurden von der Nationalen Forschungs- und Innovationsagentur Indonesiens unterstützt. Die Geldgeber spielten keine Rolle bei der Gestaltung der Studie oder bei der Erhebung und Interpretation der Daten.

Hasmiwati, Dwi Anita Suryandari und Puji Budi Setia Asih haben gleichermaßen zu dieser Arbeit beigetragen.

Doktorandenprogramm in Biomedizinischer Wissenschaft, Medizinische Fakultät, Universität Indonesien, Jakarta, Indonesien

Dendi Hadi Permana

Nationale Forschungs- und Innovationsagentur (BRIN), Eijkman-Forschungszentrum für Molekularbiologie, Cibinong, Indonesien

Dendi Hadi Permana, Ismail Ekoprayitno Rozi, Lepa Syahrani, Wuryantari Setiadi, Puji Budi Setia Asih und Din Syafruddin

Fachbereich Biologie, Fakultät für Mathematik und Naturwissenschaften, Universität Andalas, Padang, Indonesien

Hasmiwati, Nuzulia Irawati und Rizaldi

Abteilung für Biologie, Medizinische Fakultät, Universität Indonesien, Depok, Indonesien

Dwi Anita Suryandari

Doktorandenprogramm an der medizinischen Fakultät der Universität Hasanuddin, Makassar, Indonesien

Ismail Ekoprayitno Rozi

Doktorandenprogramm im Fachbereich Biologie, Fakultät für Mathematik und Naturwissenschaften, Universität Indonesien, Jakarta, Indonesien

Lepa Syahrani

Abteilung für Parasitologie, Medizinische Fakultät, Universität Hasanuddin, Makassar, Indonesien

Suradi Wangsamuda, Yenni Yusuf, Irdayanti, Hijral Aswad und Din Syafruddin

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DHP, H, DAS, PBSA und DS konzipierten die Studie, überwachten die Datenerfassung und trugen zum Verfassen des Manuskripts bei. DHP, H, IER, LP, WS, NI, R, SW, YY, I, HA und PBSA führten die Datenerfassung, Laborarbeit und Datenanalyse durch. DHP, PBSA und DS haben das Manuskript verfasst. Alle Autoren haben die endgültige Fassung des Manuskripts gelesen und genehmigt.

Korrespondenz mit Din Syafruddin.

Diese Studie wurde 2022 von der Ethikkommission für medizinische Forschung der Medizinischen Fakultät der Universität Hasanuddin, Makassar, Indonesien, genehmigt. Die ethischen Zulassungskennungen für menschliche Probanden lauten 368/UN4.6.4.5.31/PP36/2022 und 371/UN4.6.4.5.31/PP36/2022, für Tiere lautet 367/UN4.6.4.5.31/PP36/2022 .

Unzutreffend.

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden Interessen haben.

Springer Nature bleibt neutral hinsichtlich der Zuständigkeitsansprüche in veröffentlichten Karten und institutionellen Zugehörigkeiten.

Open Access Dieser Artikel ist unter einer Creative Commons Attribution 4.0 International License lizenziert, die die Nutzung, Weitergabe, Anpassung, Verbreitung und Reproduktion in jedem Medium oder Format erlaubt, sofern Sie den/die ursprünglichen Autor(en) und die Quelle angemessen angeben. Geben Sie einen Link zur Creative Commons-Lizenz an und geben Sie an, ob Änderungen vorgenommen wurden. Die Bilder oder anderes Material Dritter in diesem Artikel sind in der Creative Commons-Lizenz des Artikels enthalten, sofern in der Quellenangabe für das Material nichts anderes angegeben ist. Wenn Material nicht in der Creative-Commons-Lizenz des Artikels enthalten ist und Ihre beabsichtigte Nutzung nicht durch gesetzliche Vorschriften zulässig ist oder über die zulässige Nutzung hinausgeht, müssen Sie die Genehmigung direkt vom Urheberrechtsinhaber einholen. Um eine Kopie dieser Lizenz anzuzeigen, besuchen Sie http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. Der Creative Commons Public Domain Dedication-Verzicht (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) gilt für die in diesem Artikel zur Verfügung gestellten Daten, sofern in einer Quellenangabe für die Daten nichts anderes angegeben ist.

Nachdrucke und Genehmigungen

Permana, DH, Hasmiwati, Suryandari, DA et al. Das Potenzial für die Übertragung zoonotischer Malaria in fünf Gebieten Indonesiens, in denen nichtmenschliche Primaten leben. Parasites Vectors 16, 267 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05880-4

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Eingegangen: 20. April 2023

Angenommen: 12. Juli 2023

Veröffentlicht: 07. August 2023

DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-023-05880-4

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